Greater Lyon Area
Philanthrope, adaptable et assertive, j’ai travaillé durant 8ans comme technicienne de labo de recherche translationnelle en milieu hospitalier (oncologie/résistance à l’immunothérapie) et de labo R&D industriel (maladies infectieuses/antibiogrammes). Après une reconversion je me suis formée au métier d’Attachée de Recherche Clinique, au travers d’un DIU et d’un stage en phase précoce. Je suis actuellement en poste en CLCC sur des essais cliniques médicaments de phases II-III dans les cancers du poumon & ORL (chimiothérapie, immunothérapie, thérapie ciblée, en Per Os & IV).
Coordination d’Essais Cliniques de phase II-III sous la direction de Mme Elodie Grinand, du Dr Maurice PEROL (poumon) et du Dr Jérôme FAYETTE (ORL)
Stage de 6mois dans le cadre du Diplôme Inter-Universitaire d’Attaché de Recherche Clinique, dans l’équipe de Phase I (essais médicaments, première administration à l’homme) sous la direction de Mme Séverine Laurent et du Dr Philippe Cassier.
R&D Microbio ETEST Développement de bandelettes d'antibiogramme ETEST suivant les normes CLSI/EUCAST, et en comparaison des méthodes de référence DEG ou BMD.
Clinical Unit - Microbiology R&D and Project investigation - Service RDCS - sous la direction de Bérangère Fruiquière Traitement des réclamations clients pour la gamme VITEK2® et les gammes produites sur le site de bioMerieux La Balme, suivant les normes de référence CLSI/CASFM/EUCAST, en comparaison des CMI déterminées en méthode de référence DEG et BMD. Rédaction de rapports en anglais destinés au GCS Saint Louis puis aux clients bioMerieux. - Gestion souchier microorganismes - Identification Méthode manuelle : galeries API ATB Méthodes automatisées : VITEK® 2 / VITEK®MS - Antibiogrammes Méthode de référence : Dilution en gélose (DEG) / Microdilution liquide (BMD) Méthode automatisée : VITEK® 2 interprétation phénotypique AES Méthodes manuelles : Diffusion en milieu gélosé et synergie en bouchon de champagne / bandelettes ETEST®
Étude du rôle des points de contrôles immunitaires (spécifiquement CD70/CD27 pathway) dans l’échappement immunitaire associé à la transition epithelio-mésenchymateuse (EMT) dans les adénocarcinomes pulmonaires. Sous la direction du Dr. Pierre SAINTIGNY et du Pr. Alain PUISIEUX. - Transfection cellulaire de construction plasmidique et infection cellulaire par lentivirus et rétrovirus humain, amphotropes et écotropes (confinement niveau P3) - Cytométrie en flux (4 couleurs) - Culture primaire : développement de lignées dérivées de patients - Manipulation d’échantillon humain : sang, biopsie, résection, liquide pleural, bloc FFPE - Irradiation à forte dose (35Gy) de cellules fibroblastiques - Microscopie optique, confocale, à fluorescence - Mutagénèse dirigée et clonage de cDNA en vecteurs plasmidiques : restrictions enzymatiques • purification • transformation bactérienne • mini/maxipréparations - Extraction ARN/ADN • PCR • RT-PCR • PCR quantitative - Formation théorique INSERM CRISPR-Cas9 - Single cell RNAseq (10X Genomics, Dolomite, Cellenion) librairies et NGS - Quantification : Nanodrop, Qubit, Bioanalyzer Tapestation Encadrement technique des nouveaux arrivants et étudiants, logistique stockage commandes, planning ménage Habilitations : autoclave, P3, azote Assistante de Prévention HSE (respect des BPL et normes, gestion des déchets, des produits chimiques et des OGM)
Alternante au sein du MD3 (Medical Diagnostic Discovery Department) sous la direction du Dr. Javier YUGUEROS MARCOS. Projet de Recherche du consortium européen aspBIOmics : "Détection de l'ARN d'Aspergillus fumigatus dans des échantillons sanguins, pour le developpement d'un test de diagnostic in-vitro d'une maladie infectieuse : l'aspergillose invasive".
Hôtesse d'accueil événementielle pour de courtes missions (match de rugby, inauguration de magasin, vernissage...)